全身體積描記器（肺功能檢測系統）用于動物在清醒、無束縛狀態下，測量動物的各項肺功能參數。該系統簡單、易用、快速、數據輸出量大的特點使其成為國外藥企研發機構喜愛的研究工具，主要用于哮喘等新藥研發過程中進行粗篩實驗。其指標參數能夠良好地反映動物對藥物產生的氣道高反應情況，適合于需要動物在自然的狀態下呼吸的研究以及長期跟蹤實驗。

每個體描箱都具備霧化攻擊、溫濕度補償接口，另外還具有供水接口和氣體采樣接口以適用于各種特殊需要的研究。

WBP全身體積描記器的主要工作原理：

WBP主要檢測由動物鼻部氣流和胸腹呼吸運動引起的氣流變化導致的"box flow"數據變化，并參考溫度、濕度和壓力的數據計算得出各種指標參數。

將乙酰甲(methacholine,Mch)或生理鹽水(NS)等通過霧化器霧化入體描箱內，箱內動物吸入霧化氣體后呼吸運動的改變引起箱內壓力、流量產出相應的變化，連接于體描箱的壓力傳感器(流量傳感器)將采集到的信號傳至信號處理系統，并在信號放大器作用下轉化為呼吸動力學各指標值。

全身體積描記系統可同時連接6個體描箱，相應的傳感器可以將各個箱內壓力、流量的變化同步傳至信號處理系統處理，因此可以同步為多只實驗動物進行肺功能檢測。

型號：WBP

小動物全身體積描記器的主要特點：

· 適用于小鼠、大鼠、豚鼠（可定做猴子、比格犬等大動物型）

· 無需手術，動物處于清醒的自由活動狀態；

· 實時監測潮氣量，并有多個因素補償（如Epstein & Epstein, Drorbaugh & Fenn)

· 數據結果不受麻醉和身體創傷的副作用影響；

· 實時環境監測（氣壓、溫度、濕度）

· 可長達數月對同一只動物重復實驗，是長期跟蹤研究的理想方式；

· 允許單一實驗持續數小時至數天；

· 可同時對6只動物進行檢測，是進行篩選實驗的良好選擇；

· 可進行霧化給藥（氣霧攻擊）；

· 實驗操作簡單易行；

· 可靈活與其它實驗設備或方法聯合使用

全身體積描記器的主要應用方向：

· 氣道高反應模型Airway hyper-reactivity models

· 遲發相反應研究(late phase response,LPR) Late phase response studies

· 慢性疾病研究Chronic studies

· 藥物篩選Drug screening

· 毒理學Toxicology

分析軟件：

搭配不同的適配器可用于檢測不同的動物：

小鼠體積描計器	大鼠體積描計器
豚鼠體積描計器	猴子體積描計器

如需檢測更多肺功能參數，可選擇：

多參數肺功能檢測系統

如需檢測小動物的氣道阻力，可選擇：

四通道氣道阻力和肺順應性檢測系統

小動物肺功能測量儀相關文獻：
1.Pinart M, Hussain F, Shirali S, et al. Role of mitogen-activated protein kinase phosphatase-1 in corticosteroid insensitivity of chronic oxidant lung injury[J]. European journal of pharmacology, 2014, 744: 108-114.
2.Oyamada Y, Murai M, Harada N, et al. Age-dependent involvement of ATP-sensitive potassium channel Kir6. 2 in hypoxic ventilatory depression of mouse[J]. Respiratory physiology & neurobiology, 2008, 162(1): 80-84.
3.H?kansson H F, Smailagic A, Brunmark C, et al. Altered lung function relates to inflammation in an acute LPS mouse model[J]. Pulmonary pharmacology & therapeutics, 2012, 25(5): 399-406.
4.Nelson M, Lever M S, Dean R E, et al. Bioavailability and efficacy of levofloxacin against Francisella tularensis in the common marmoset (Callithrix jacchus)[J]. Antimicrobial agents and chemotherapy, 2010, 54(9): 3922-3926.
5.McGonigal R, Cunningham M E, Yao D, et al. C1q-targeted inhibition of the classical complement pathway prevents injury in a novel mouse model of acute motor axonal neuropathy[J]. Acta neuropathologica communications, 2016, 4(1): 1-16.
6.Ra?id O, Chirita D, Iancu A D, et al. Assessment of routine procedure effect on breathing parameters in mice by using whole-body plethysmography[J]. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science, 2012, 51(4): 469-474.
7.Halstead S K, Zitman F M P, Humphreys P D, et al. Eculizumab prevents anti-ganglioside antibody-mediated neuropathy in a murine model[J]. Brain, 2008, 131(5): 1197-1208.
8.Séi H. Blood pressure surges in REM sleep: A mini review[J]. Pathophysiology, 2012, 19(4): 233-241.
9.Nelson M, Lever M S, Dean R E, et al. Characterization of lethal inhalational infection with Francisella tularensis in the common marmoset (Callithrix jacchus)[J]. Journal of medical microbiology, 2010, 59(Pt 9): 1107.
10.Halstead S K, Zitman F M P, Humphreys P D, et al. Eculizumab prevents anti-ganglioside antibody-mediated neuropathy in a murine model[J]. Brain, 2008, 131(5): 1197-1208.
11.Hur G Y, Lee S Y, Lee S H, et al. Potential use of an anticancer drug gefinitib, an EGFR inhibitor, on allergic airway inflammation[J]. Experimental & molecular medicine, 2007, 39(3): 367-375.